CARY BLAIR MEDIUM: BEGRUNNELSE, KLARGJØRING OG BRUK - BIOLOGI - 2026

Den gjennomsnittlige Cary Blair er en halvfast agar, brukt til transport og bevaring av biologiske prøver som inneholder tarmpatogener, mikroorganismer og anaerob labile. Som alle transportmidler er dens funksjon å holde prøven under optimale forhold til den er dyrket. De patogene mikroorganismer som er til stede, så vel som den medfølgende mikrobiota, må forbli levedyktige, men uten å øke befolkningen.

Cary Blair Medium er resultatet av formuleringsendringen til Stuart Transport Medium. Modifiseringen ble utført i 1964 og besto av å erstatte pH-reguleringssystemet (glyserofosfat) med en fosfatert uorganisk buffer.

A. Culturette med Cary Blair Medium B. Avføringssamler med Cary Blair Medium. Kilde: A. Video Meganhow, skaff en sårkultur 2011 youtube.com B. Bruker: Mattes

Omformuleringen var nødvendig fordi skaperne innså at glyserofosfat etter en viss tid kunne metaboliseres av noen saprofytiske bakterier. Disse multipliserer overlappende patogener som er til stede.

Andre forandringer var eliminering av metylenblått, samt en justering av pH til alkalitet (pH 8,4). Alle disse endringene forbedret effektiviteten av transportmidlene.

Opprinnelig ble Cary Blair-medium brukt til vedlikehold av tarmpatogener, som Shigella flexneri, Salmonella sp, Vibrio cholerae og Campylobacter sp.

Effekten av å bevare levedyktigheten av krevende og labil patogener, slik som: Neisseria gonorrhoeae, Haemophilus influenzae, Neisseria meningitidis, Bordetella pertussis, Streptococcus pneumoniae og noen anaerober, har imidlertid blitt sett.

Basis

Cary Blair Medium inneholder natriumklorid, natriumtioglykollat, dinatriumfosfat, kalsiumklorid og agar.

Natriumklorid opprettholder den osmotiske balansen i mediet, dinatriumfosfat og kalsiumklorid balanserer pH. For sin del opprettholder natriumtioglykollat ​​et lavt oksidasjonsreduksjonspotensial, mens den lille delen av agar gir halvfast konsistens.

Cary Blair-mediet inneholder ikke næringsstoffer, siden funksjonen til et transportmedium er å holde prøven uten at den gjennomgår endringer med tanke på fuktighet og mikrobiell belastning; det vil si at den unngår dehydrering av prøven mens den bevarer levedyktigheten og mengden av mikroorganismer som er til stede.

Til slutt forhindrer den svakt alkaliske pH-verdien død av mikroorganismer ved surhet, spesielt Vibrios er veldig følsomme for syrer.

Forberedelse

Cary Blair-medium er kommersielt tilgjengelig som en spesiell bruksklar enhet. Transportsystemet er dekket av en plastpekepose. Inne i den inneholder en vattpinne for å samle prøven og beholderrøret for Cary Blairs halvfaste medium.

Også i markedet er det kommersielle hus som leverer det dehydrerte mediet for tilberedning på laboratoriet.

For å gjøre dette må du veie 13,2 g av det dehydrerte mediet og løse det opp i en liter destillert vann. Varm opp og rist preparatet til det er helt oppløst. Fordel mediet i skruekappede prøverør (Bakelite).

Damp rørene i 15 minutter. La avkjøles og hold i romtemperatur til bruk.

Uinokulert Cary Blair-medium kan lagres optimalt i opptil 18 måneder ved romtemperatur.

PH i mediet må justeres til 8,4 ± 0,2. Fargen på det tilberedte mediet er beige, med en viss opalesens.

Bruk

Type prøver

Cary Blair Medium brukes når avføringsprøver, rektal vattpinner og vaginal vattpinner ikke kan behandles umiddelbart.

Når ingen transportmidler er tilgjengelige, kan prøver lagres ved -70 ° C.

prøvetaking

Vattpinnen impregneres med prøven, og den føres inn i Cary Blair-mediet, uten å nå bunnen.

Identifikasjon av prøven

Cary Blair-mediet må ha en etikett der grunnleggende data er plassert, for eksempel: for- og etternavn til pasienten, identifikasjonsnummer for prøven, kilde til prøvesamlingen, behandlende lege, dato og klokkeslett for samlingen. prøve, presumptiv diagnose, antibiotikabehandling.

Overføre

Tett tildekket og transportert ved romtemperatur for fekale prøver. For vaginale prøver på jakt etter anaerobe mikroorganismer, anbefales det å transportere prøvene ved 4 ° C.

I alle tilfeller er anbefalt overføringstid 4-6 timer, med maksimalt 24 timer.

Hvis mistanke om tilstedeværelse av Campylobacter jejuni i avføringsprøver og disse ikke kan behandles innen 24 timer, anbefales lagring i Cary Blair medium ved 4 ° C.

Undersøkelser som ble utført på Cary Blair transportmiddel

Flere studier har vist at Cary Blair-medium kan forbli levedyktig for enteropatogene mikroorganismer av slekten Shigella og Salmonella i opptil 49 dager etter at prøven ble tatt.

Vibrio cholerae, et annet viktig tarmpatogen, er i stand til å overleve i 22 dager, mens Yersinia pestis (forårsakende middel for bubon og pneumonisk pest) kan utvinnes etter 75 dager.

Til tross for den påviste holdbarheten når det gjelder utvinning av disse mikroorganismene, anbefales det imidlertid at prøvene som tas ble transportert i Cary Blair-mediet til laboratoriet så raskt som mulig.

På samme måte, når prøven når laboratoriet, må den podes uten forsinkelse i de respektive kulturmedier.

På den annen side anbefales Cary Blair-medium, i tillegg til å være nyttig for transport av fakultative mikroorganismer, til prøver som inneholder anaerobe patogener.

På denne måten gjennomførte DeMarco et al. I 2017 en studie med tittelen: Overlevelse av vaginale mikroorganismer i tre kommersielt tilgjengelige transportsystemer.

De demonstrerte at Cary Blair transportmedium er det beste transportmediet for bevaring og utvinning av vaginale anaerobe mikroorganismer. På samme måte viste de at den høyeste utvinningsgraden ble oppnådd når overføringstemperaturen var 4 ° C.

Derfor konkluderes det med at transporttemperaturen for vaginal vattpinner (anaerobe mikroorganismer) bør være ved 4 ° C. Mens fecale prøver på jakt etter fakultative mikroorganismer, er den ideelle temperaturen romtemperaturen.

QA

For å evaluere kvalitetskontrollen av Cary Blair transportmedium, stammer kjent som Shigella sonnei ATCC 11060, Salmonella choleraesuis ATCC 14028, Vibrio cholerae og Campylobacter sp.

Mediet inokuleres med den valgte stammen og holdes ved romtemperatur i 24 timer. De blir så sådd i de tilsvarende kulturmediene. I alle tilfeller forventes en tilfredsstillende utvinning av den aktuelle mikroorganismen.

referanser

1. DeMarco AL, Rabe LK, Austin MN, et al. Overlevelse av vaginale mikroorganismer i tre kommersielt tilgjengelige transportsystemer. Anaerobe. 2017; 45: 44–49.
2. Wasfy M, Oyofo B, Elgindy A, Churilla A. Sammenligning av konserveringsmedier for lagring av avføringsprøver. J Clin Microbiol. nitten nitti fem; 33 (8): 2176–2178.
3. Dan M, Richardson J, Miliotis MD, Koornhof HJ. Sammenligning av konserveringsmedier og fryseforhold for lagring av avføringseksempler. J Med Microbiol. 1989; 28 (2): 151-4.
4. Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. (2004). Mikrobiologisk diagnose. 5. utg. Redaksjonell Panamericana SA Argentina.
5. Forbes B, Sahm D, Weissfeld A. (2009). Bailey & Scott mikrobiologisk diagnose. 12 utg. Redaksjonell Panamericana SA Argentina.
6. Conda Pronadisa Laboratories. Half Cary Blair. Tilgjengelig på: condalab.com
7. Metrix Laboratory. Cary Blair. Tilgjengelig på: metrixlab.mx