FAUST-TEKNIKK: FUNDAMENT OG MATERIALER, TRINN, FORDELER, ULEMPER - MEDISIN - 2026

Den Faust teknikken er en metode som gjør det mulig for konsentrasjonen av enkelte egg og / eller larver av parasitter som finnes i avføring av flytende. Det brukes når direkte koproparasitologiske tester er negative, eller når du ønsker å få rene prøver uten detritus.

Konsentrasjonsmetoder for koproparasitologiske undersøkelser er av tre typer: ved flotasjon, ved sedimentasjon eller ved metoder som kombinerer de to foregående. Disse metodene øker sjansene for positive resultater.

Avføring analyse.

Faust-metoden består i å blande deler av avføringsprøven med et stoff tettere enn eggene eller parasittene som skal konsentreres. Dette fører til at de, hvis de er mindre tette, flyter på overflaten. Supernatantvæsken blir samlet og sett under et mikroskop for identifisering og kvantifisering.

Denne metoden brukes til å visualisere helminth egg. Samtidig har det vist seg å være en veldig sensitiv metode for diagnose av Giardia lamblia, en flagellert protosoom som er bredt spredt over hele verden. Flotasjonsmetoder anbefales ikke for veldig tunge parasittegg som bendelorm og trematoder.

Parasitter er en av de mest utbredte tarminfeksjonene i hele verden, spesielt i fattige land med dårlige sanitære tiltak. Av denne grunn er det veldig nyttig å ha sensitive metoder for å identifisere og kvantifisere disse parasittene for diagnose og behandling.

Fundament og materialer

Teknikken er basert på eksistensen av de forskjellige spesifikke tyngdekraftene til egg, parasitter, cyster, larver og detritus, ved å bruke sinksulfatløsninger som en flotasjonsmetode.

Begrunnelsen bak teknikken er å blande prøven med en sinksulfatoppløsning som har en tetthet som er større enn lysere egg, larver eller parasitter.

Dette gjør at de tyngre elementene kan utfelles og de lettere flyter, som vises i supernatanten etter sentrifugering av prøvene.

materialer

Beholdere for samling av fekale prøver (Kilde: Bobjgalindo via Wikimedia Commons)

- Tilbered en sinksulfatoppløsning med en tetthet på 1,18 eller 1,2 g / ml hvis prøven ble behandlet tidligere.

- Forbered et stativ med tidligere merkede prøverør.

- Ha en sentrifugalmaskin.

- Ha mikroskopbilder og dekkglass på hånden. Alle må merkes

- Forsikre deg om at en Lugols løsning er tilgjengelig for å farge arkene.

- Ha gasbind for å filtrere.

- Ha trakter og destillert vann.

- Finn merkede plast- eller pappbeholdere.

- Også applikatorer og sterilt håndtak på 5 mm.

- En lettere for å sterilisere håndtaket.

Steps

Makroskopisk og mikroskopisk undersøkelse

For enhver avføringsundersøkelse begynner undersøkelsen med det som kalles "grov undersøkelse" av prøvene.

Konsistensen, fargen, tilstedeværelsen av det som ser ut til å være blod, tilstedeværelsen av slim og tilstedeværelsen av voksne parasitter er beskrevet.

Så fortsetter vi til den "mikroskopiske undersøkelsen" av avføringen, dette avhenger av metoden. Den enkleste er metoden direkte smøring, som er den enkleste mikroskopiske observasjonsmetoden for parasitter.

Fotografi av observasjonen av Gardia lamblia, en tarmsparasitt (Kilde: Riddlemaster via Wikimedia Commons)

Prosedyren innebærer å plassere en liten mengde av prøven direkte på et lysbilde. Plasser flere dråper saltoppløsning som skal ha lignende størrelse som prøven. Bland saltoppløsningen med avføringen til det dannes en homogen blanding. Plasser et dekkglass og undersøk under mikroskopet.

Original Faust-teknikk

Den andre prosedyren består av Faust float-metoden, hvis opprinnelige versjon består av:

1- Plasser omtrent to gram avføring i en passende beholder for dette formålet.

2- Tilsett 30 ml sinksulfatflotasjonsløsning som det blir laget en emulsjon ved å blande løsningen med avføring.

3- Sil med en sil i en annen beholder og overfør til prøverøret.

4- Tilsett mer flotasjonsløsning til det dannes en menisk i røret.

5- Plasser et glass dekkglass på menisken. La den hvile i 10 til 15 minutter.

6- Fjern dekkglasset og legg det på et lysbilde som skal undersøkes under et mikroskop.

Faust-teknikk ved sentrifugering

Opprinnelig brukte metoden ikke sentrifugering, men den er nå inkludert ettersom bedre resultater oppnås. Teknikken innebærer en rekke trinn for å oppnå en riktig prosedyre, disse er som følger:

1- Avføringen vaskes med vann, blandes godt og filtreres deretter med gasbind brettet i fire. Prøven legges i et reagensrør.

2- Sentrifuger og fjern supernatanten (prøver som holdes over vann). Trinn 1 og 2 gjentas til supernatanten er "klar".

3- Zinksulfat tilsettes den filtrerte og sentrifugerte prøven.

4- Det blandes godt.

5- Sentrifuge igjen i 1 minutt ved 2500 o / min (omdreininger per minutt).

6- Supernatanten utvinnes med en steril løkke på ca. 5 mm; rørene skal ikke ristes.

7- Prøven utvunnet fra supernatanten plasseres på et lysbilde og en dråpe Lugol kan plasseres i farge, dekkglasset plasseres og observeres under et mikroskop.

8- Beholderne og prøverørene er merket.

Fordel

- Elementene som brukes for diagnosen kan sees rene og uten “detritus”, dette letter observasjonen av arket og reduserer tiden som brukes til diagnosen.

- I supernatanten utvinnes både larver, egg og / eller cyster.

- Det er en veldig lavkostmetode.

- Prosedyren er veldig enkel og enkel å implementere.

- Diagnosen er rask og nøyaktig.

- På grunn av viktigheten og den høye forekomsten av parasitose i fattige land, er disse rimelige og brukervennlige metodene ideelle for diagnostisering og overvåking av disse patologiene.

ulemper

Densiteten til flotasjonsløsningen gir en sammentrekning av larvene, det vil si at de krymper, og i løpet av en veldig kort periode kan deformere seg. Dette tvinger sensor til å stille diagnosen umiddelbart, og de behandlede prøvene kan ikke holdes for fremtidige undersøkelser.

Som med alle mikroskopiske identifikasjonsmetoder, kreves et høyt erfarent undersøkende personale for å stille nøyaktige diagnoser.

Den raske deformasjonen av elementene som er nødvendige for diagnosen, selv om de er en åpenbar ulempe, kan overvinnes ved å gjøre øyeblikkelig mikroskopiske observasjoner.

referanser

1. Ananias, FL (2017). Evaluering av følsomheten til Faust-metoden og spontan sedimentasjon for diagnose av giardiasis. Cuban Journal of Tropical Medicine, 68 (2).
2. Bartlett, MS, Harper, K., Smith, N., Verbanac, P., & Smith, JW (1978). Sammenlignende evaluering av en modifisert zinksulfat flotasjonsteknikk. Journal of clinical microbiology, 7 (6), 524-528.
3. Becker, AC, Kraemer, A., Epe, C., & Strube, C. (2016). Følsomhet og effektivitet for utvalgte koproskopiske metoder - sedimentasjon, kombinert sinksulfat sedimentasjon-flotasjon, og McMaster-metoden. Parasitology research, 115 (7), 2581-2587.
4. Garcia, LS, Arrowood, M., Kokoskin, E., Paltridge, GP, Pillai, DR, Procop, GW,… & Visvesvara, G. (2018). Laboratoriediagnose av parasitter fra mage-tarmkanalen. Gjennomgang av kliniske mikrobiologier, 31 (1), e00025-17.
5. Summers, WA (1942). En modifisering av sinksulfat-sentrifugalflotasjonsmetode for utvinning av helminth-ova i formalisert avføring. Journal of Parasitology, 28 (4), 345-346.